Правила дезинфекции и стерилизации в салонах красоты. Дезинфекция и стерилизация инструментов для маникюра — важные правила

Инструменты

1 группа –

2 группа

3 группа

1 этап – дезинфекция

3 этап – стерилизация

I этап обработки – дезинфекция

Дезинфекция – комплекс мероприятий, направленных на уничтожение патогенных и условно патогенных возбудителей на поверхности изделий медицинского назначения.

Дезинфекции подлежат все изделия после применения у пациента.

Методы дезинфекции.

1. Механический удаление возбудителей с поверхностей предметов путем мойки, стирки, вытряхивания, выколачивания, проветривания, собирания пыли пылесосом.

2. Физический – удаление возбудителей воздействием высокой температуры (кипячение, горячий воздух), УФО.

3. Химический – удаление возбудителей воздействием химических препаратов (протирание, орошение, замачивание в дезинфицирующих растворах). При обработке с дезинфицирующими растворами необходимо помнить – дезинфицирующие растворы – это яд, поэтому:

1) Емкости с дезинфицирующими растворами должны быть закрыты.

2) С дезинфицирующими растворами необходимо работать в специальной одежде (4-х слойная маска, защитные очки, резиновые технические перчатки).

3) Дезинфицирующие растворы должны быть менее токсичными, т.е. 4-й катекогии токсичности.

4. Комбинированный – мойка, затем замачивание в дезинфицирующих растворах (эндоскопическое оборудование).

Выбор метода дезинфекции зависит от особенностей изделия и его назначения.

Уровни дезинфекции.

Низкий уровень дезинфекции или социальный. Цель – уничтожение бактерий. К нему относятся: дезинфекция изделий с дезинфицирующими растворами низкой концентрации. Например, 1% раствор хлорамина, 3% раствор перекиси водорода.

1. Средний уровень дезинфекции. Цель – уничтожение ВИЧ, ВГ, ОРВИ, сифилиса. Например, 3% раствор хлорамина, 4% раствор перекиси водорода.

2. Высокий уровень дезинфекции – использование дезинфицирующих растворов высокой концентрации, способных уничтожить возбудителей туберкулеза, гнойных инфекций, кандидоза, анаэробных инфекций (столбняк, газовая гангрена, сибирская язва). Например, 5% р-р хлорамина, 6% р-р H 2 O 2 + 0,5% р-р МС.

Режим дезинфекции – это концентрация дезинфицирующего раствора или высокая температура и экспозиция, способствующие уничтожению возбудителей.

Выбор уровня и режима дезинфекции зависит от стойкости возбудителя во внешней среде.

Режим дезинфекции

метод	Дез. р-р (%)	Экспозиция (мин.)	Уровень дезинфекции	Срок хранения рабочих растворов
1. Физический (кипячение)	Дистил. вода 2% р-р питьевой соды (20 гр соды + до 1 л. Воды) 2% р-р питьевой соды		При всех инфекциях кроме анаэробной Анаэробная инфекция	однократно
1. паровой	Водяной насыщенный пар под давлением 0,5 атм. + 110 0 С		При всех инфекциях
3. воздушный	Сухой горячий воздух 120 0 С		При всех инфекциях
4. химический метод (замачивание в дез. растворах)	Хлорамин 1% 3% 5% 5%		Низкий уровень (посуда, мензурки) Средний уровень (ВИЧ, гепатит, ОРВИ) Гнойная и кандидозная инфекция Туберкулез	Однократно
Н 2 О 2 – перекись водорода
	3% 3% 6% 4% 6% Н 2 О 2 + 0,5% МС		Низкий уровень Туберкулез ВИЧ, гепатит, ОРВИ Сифилис Гнойная, кандидозная, анаэробная инфекции	Однократно
	Бианол 2% Лизафин 1%		При всех инфекциях При всех инфекциях
	Сайдекс 2%
	3% р-р борной кислоты + 50 0 С		Синегнойная инфекция	Однократно
	Сайдекс ОПА 0,55%		При всех инфекциях, кроме туберкулеза Туберкулез

Примечание:

1. Время кипячения отсчитывается от момента закипания.

2. Температура дез. р-ров должна быть 18-20 0 С.

3. Дез. растворы (хлорамин, Н 2 О 2) применяются однократно, бианол, лизафин многократно, если не изменился их цвет.

4. Инструменты замачиваются в дез. растворы в разобранном виде, с заполнением всех полостей и каналов, высота растворов над инструментами 3-5 см.

5. Инструменты в растворы многократного применения замачиваются сухими.

6. После дезинфекции инструменты ополаскиваются в проточной воде до исчезновения запаха (от 3 до 10 минут).

Контроль качества дезинфекции

Метод контроля – бактериологический.

Качество дезинфекции оценивается по отсутствию роста в смывах, взятых с инструментов, поточенного стафилококка или кишечной палочки. Смыв берет лаборант-бактериолог из СЭС или ЛПУ.

II этап обработки – предстерилизационная очистка.

Цель – удалить с инструмента кровь, жиры, остатки лекарственных препаратов и моющих средств, ржавчину.

Этапы очистки, если для дезинфекции применяется дезинфицирующий раствор без моющих средств:

1. Ополаскивание в проточной воде 30 сек.

2. Замачивание в моющем растворе на 15 мин.

3. Мойка каждого инструмента в этом же моющем растворе ватно-марлевым тампонов 1 мин.

4. Ополаскивание в проточной воде 10 мин.

5. Ополаскивание (обессоливание) в дистиллированной воде 30 сек.

a. В сухожаровом шкафу при температуре 80-85 0 С

b. На чистых салфетках или простынях

Инструмент сушится до полного исчезновения влаги и на стерилизацию отдается сухим.

Приготовление моющих растворов

1. Раствор готовится из порошков с биодобавками «ЭРГО», «ЗИФА», «Луч». Порошки закупаются в областном центре дезинфекции.

1 л 0,5% р-ра «ЗИФА» = 5 гр. «ЗИФА» + до 1 л дистиллированной воды.

Для обработки инструментов используется дистиллированная вода (бессолевая вода), чтобы не оседали соли на инструментах. Если нет дистиллированной воды, можно использовать дваджы кипяченую воду.

Раствор готовится перед применением и используется двукратно. Температура раствора 45-50 0 С

2. Раствор готовится из порошков без биодобавок «Лотос».

1 л 0,5% р-ра воды +0,5% р-р «Лотос» = 6% раствор перекиси водорода – 80 мл +5 гр «Лотос» + до 1 л дистиллированной воды. Использование растворов пергидроли в отделениях не допускается.

Раствор можно подогревать до шести раз в сутки, если не изменился его цвет.

Температура раствора 50-55 0 С

Температура моющих растворов в процессе замачивания инструментов не поддерживается.

3. Сайдезим 0,8% или 1,6%. Температура раствора 18-20 0 С.

В настоящее время в продаже имеется большое количество дезинфицирующих средств, в которые входят моющие средства, поэтому их можно использовать для проведения дезинфекции и предстерилизационной очистки совмещенной в один этап.

преимущества дезинфицирующих растворов:

1. Многократного применения;

2. Менее токсичные;

3. Легко отмываются от моющих средств;

4. Не подогреваются;

5. Одна концентрация и короткая экспозиция;

6. Дезинфекция и предстерилизационная очистка проводится в один этап;

7. Богатый выбор (по цене, назначению и т.д.).

Подготовка инструментов к проведению дезинфекции растворами многократного применения

1. Инструменты, испачканные кровью, слизью и гноем перед дезинфекцией отмываются от этих биологических сред.

Правило отмывания:

Инструменты инфицированы, поэтому мед. сестра надевает спец. одежду для профилактики заражения.

Инструменты отмываются в пластиковых контейнерах.

Растворы, применяемые для отмывания инструментов:

Б) дезинфицирующие растворы (4% раствор перекиси водорода).

В растворах, содержащих хлор, инструменты не отмываются, т.к. хлор обладает сильными фиксирующими и коррозийными свойствами.

В растворах особенно тщательно отмываются места соединения инструментов.

Например, замок у корнцанга и т.д. Инструмент отмывается ватно-марлевым тампоном на корнцанге.

После отмывания инструментов от биологических сред, они погружаются в дезинфицирующий раствор для проведения дезинфекции.

2. Инструменты, испачканные масляными препаратами, перед дезинфекцией обезвреживаются.

1) Для обработки изделий, испачканных масляными препаратами, выделяются отдельные емкости.

2) Обезжиривающие растворы: 2% раствор питьевой соды

Инструменты, если позволяет материал, из которого они изготовлены, кипятятся в 2% растворе питьевой соды 15 мин

Инструменты, которые нельзя подвергать воздействию высокой температуры, замачиваются в 2% раствор питьевой соды, при температуре 50 0 С на 15-30 мин

Условия проведения контроля

1. Контролю подлежит 1% от обработанной партии, но не менее 3-5 штук.

2. Инструмент должен быть холодным и сухим.

При несоблюдении этих условий может быть ложноположительная реакция.

Азопирамовая проба

Маточным раствором является азопирам, который в холодильнике хранится 2 месяца, вне холодильника – 1 месяц с момента изготовления азопирама.

Рабочий раствор азопирама готовится из равных объемов азопирама и 3% раствора перекиси водорода перед применением.

Срок годности рабочего раствора азопирама 40 мин.

Рабочий раствор азопирама проверяется на пригодность не реже одного раза в неделю: на предметное стекло с мазком крови капается 2-3 капли рабочего раствора азопирама, если в течение одной минуты появилось сине-фиолетовое окрашивание, раствор годен к применению.

Техника проведения пробы

Лоток выстилается белой салфеткой, на которую кладется 3-5 шт. инструментов. Инструменты должны быть разной конструкции. Раствор капается на рабочие поверхности, трудно отмываемые части инструмента.

В инструменты, имеющие полости или каналы, раствор набирается, а на плоские – капается из пипетки 2-3 капли раствора и сразу засекается время.

Если в течение одной минуты появилось сине-фиолетовое окрашивание 0 реакция на кровь положительная; бурое – на хлор и ржавчину, розовое – на моющие средства.

Результаты азопирамовой пробы заносятся в журнал.

Фенолфталеиновая проба

Рабочий раствор – 1% спиртовой раствор фенолфталеина. В холодильнике хранится один месяц, вне холодильника – 15 дней.

Техника постановки пробы как и азопирамовая.

Если появилось в течение одной минуты розовое окрашивание, реакция на моющие средства положительная.

Проба суданом-3

Проба ставится только на инструменты, испачканные масляными препаратами.

Рабочий раствор – судан-3. В холодильнике хранится 6 мес., вне холодильника – 3 мес.

Техника постановки пробы.

Инструмент протирается салфеткой, смоченной суданом-3, через 10 сек. Инструмент ополаскивается проточной водой, обильной струей. Если на инструменте появились желтые пятна или подтеки, реакция на масляные препараты положительная. При отрицательных пробах растворы не меняют свою окраску.

При положительных пробах вся партия инструментов проходит повторную обработку.

Инструменты, использованные для контроля, при положительных и отрицательных пробах подвергаются повторной обработке.

III этап – стерилизация

Цель – уничтожить на инструментах все виды микроорганизмов, в т.ч. капсульные и споровые.

Методы стерилизации

1. Физические – паровой, воздушный, радиационный, гласперленовый.

2. Химические – газовый или растворами химических препаратов.

3. Комбинированный (плазменный).

Выбор метода стерилизации зависит от материала, из которого изготовлен инструмент.

Подготовка биксов к стерилизации

Бикс, перед упаковкой в него изделий, протирается 2-х кратно с интервалом 15 мин. Внутри и снаружи рабочим дезинфицирующим раствором, затем бикс внутри выстилается большой салфеткой, которая должна снаружи бикса свисать на 2/3 высоты бикса. На дно кладется индикатор. Изделия, упакованные в бязь или крафт-бумагу, укладываются в бикс в вертикальном положении или на ребро, расстояние между упаковками равно толщине ладони (правило ладони). В середину бикса кладется индикатор. Большой салфеткой изделия закрываются и наверх кладется еще один индикатор. Бикс закрывается и к ручке бикса прикрепляется бирка, на которой проставляется дата и час упаковки бикса и указываются изделия, уложенные в бикс. Окошечки бикса обязательно закрыты. Биксы доставляются в ЦСО в двух мешках, внутренний мешок матерчатый и наружный клеенчатый, если отделение находится с ЦСО в одном здании. При доставке биксов через улицу, они помещаются в три мешка, внутренний и наружные – матерчатые, в середине – клеенчатый мешок.

Мешки один раз в неделю стираются, а внутренний матерчатый мешок стерилизуется вместе с биксом, т.к. стерильный бикс выдается в стерильном мешке. Клеенчатые мешки, перед закладкой в них стерильного бикса, протираются двукратно с интервалом 15 мин., внутри и снаружи рабочим дезинфицирующим раствором.

Биксы перед вскрытием протираются двукратно с интервалом 15 мин. Рабочим дезинфицирующим раствором, проверяется на герметичности и сроки стерилизации. На бирке должна быть проставлена дата, час стерилизации бикса и роспись мед. сестры, проводившей стерилизацию. Мед. сестра на бирке проставляет дату, час вскрытия бикса и свою роспись.

При вскрытии бикса обращается внимание:

1. На индикатор, если мочевина, кристаллы должны быть расплавлены, индикаторная лента должна быть коричневого цвета. Индикатор не удаляется из бикса до тех пор, пока там находятся стерильные изделия. При выкладке изделий на стерильный стол, индикатор из бикса переносится на стол, а по окончании работы наклеивается в журнал.

2. Изделия в биксе должны быть сухими , влажные изделия не стерильны !

Во избежание получения влажных медицинских изделий, биксы перед получением их и выдачей – взвешиваются.

После вскрытия бикса изделия, выложенные на стерильный стол, стерильны шесть часов; изделия, оставленные в биксе стерильны еще 1 сутки. Упаковки из бикса берутся только стерильным пинцетом.

Радиационный метод.

Стерилизация осуществляется гамма-лучами. Метод этот используется в промышленности.

Гласперленовый метод.

Стерилизация осуществляется при температуре 220 0 С – 20 секунд.

Газовый метод

Стерилизация осуществляется газами растворов химических препаратов. Данный метод имеет недостаток – химические препараты (формальдегид, окись этилена), используемые для стерилизации, токсичны, поэтому изделия после стерилизации могут быть использованы только после испарения формальдегида с инструмента, а на это уходит от 8 до 20 суток.

Данным методом можно стерилизовать оптику.

II этап.

Ополаскивание изделий под проточной водой до исчезновения запаха.

III этап.

Сбор изделий после их дезинфекции производится в двухслойные мешки из пластика, мешки плотно закрываются.

IV этап. Утилизация:

А) централизованная . Мешки, плотно закрытые, с отходами доставляются в централизованный пункт сбора отходов, откуда они забираются в специально оборудованные машины предприятий, занимающихся переработкой отходов.

Б) Сжигание в печах котельных больниц на настоящий момент недопустимо. В топках котельных, где сжигались отходы, нет устройств, обеспечивающих экологически не загрязняющих атмосферу.

В) утилизация отходов в мусоросборники .

Условие – перед утилизацией изделия деформируются, чтобы ими никто не смог воспользоваться. Для этого шприцы и иглы упаковываются в двухслойную крафт-бумагу и автоклавируются при режиме 2 атм., 132 0 С, 20 минут, или заладываются в сухожаровой шкаф и деформируются при режиме 180 0 С, 60 мин. Пластмасса расплавляется при высокой температуре. Вследствие этого процесса выделяется большое количество токсических веществ, которые очень вредны для человека, что является недопустимым.

Накрытие стерильного стола

Приказ МЗ СССР № 729 от 1978 г. «Об улучшении медицинской помощи больным с гнойными хирургическими заболеваниями и усилением мероприятий по борьбе с внутрибольничными инфекциями».

Цель – предупреждение риска загрязнения хирургических изделий медицинского назначения.

Стерильный стол накрывается:

В операционных (большой и малый операционный стол);

В стоматологических кабинетах;

В перевязочных кабинетах;

В хирургических кабинетах поликлиник.

Условия накрытия стерильного стола .

1. Стерильный стол накрывается перед началом смены, на 6 часов. Малый операционный стол накрывается на одну операцию.

2. Стерильный стол должен отстоять от окна не менее 2 метров и от стены на 30-50 см.

3. Стерильный стол должен быть изготовлен из металла или покрыт пластиком, чтобы хорошо обрабатывался.

4. Размеры стола должны быть не менее 1,5 м.

5. Стол накрывается стерильными руками, а со стола изделия берутся сухим стерильным пинцетом.

6. Стерильный пинцет хранится в сухой стерильной емкости, накрытый стерильной салфеткой в течение 2 часов.

7. Высота стерильного стола должна быть на уровне пояса медицинской сестры.

Перед накрытием стерильный стол протирается двукратно с интервалом 15 мин. рабочим дезинфицирующим раствором. Стол протирается в одном направлении сверху вниз. Для обработки стола выделяются две ветоши и емкость с маркировкой «обработка стерильного стола».

К задней ножке ниже уровня простыни слева прикрепляется бирка, где проставляется дача, час накрытия стерильно стола и роспись медицинской сестры, накрывшей стол.

Стол накрывается восемью слоями простыней – четыре верхних слоя и четыре нижних.

Простыни свисают от края стола на 15-30 см, а с рабочей стороны верхняя простынь должна быть выше нижней, чтоб предупреждает контаминацию микробами инструментов и внутренних поверхностей простыни. С тыльной стороны слои простыней скрепляют бельевыми цапками. Боковые корнцанги с передней стороны крепятся только к верхним слоям простыней и служат для приподнимания переднего края простыни, когда необходимо взять нужный инструмент.

При открывании верхней простыни, простынь укладывается «гармошкой», что предупреждает инфицирование стерильной поверхности простыни.

Стерильные инструменты раскладывают, отступая на 10 см от края стола, что предупреждает инфицирование инструмента.

Стерильный инструмент со стерильного стола берется только сухим стерильным пинцетом, который хранится в стерильном лотке, накрытым стерильной салфеткой.

Стерильный лоток со стерильным пинцетом хранится на тумбочке, стоящей недалеко от стерильного стола. Стерильный лоток со стерильным пинцетом меняется через 2 часа.

Обработка рук

Три уровня обработки рук.

1 уровень – механическая очистка рук (социальный уровень).

Цель – удалить с кожи большую часть транзиторной (временной) микрофлоры (90-98%).

Механическая очистка рук проводится:

Перед приемом пищи, кормлением больных;

Работой с продуктами питания;

После посещения туалета;

Перед и после ухода за пациентом;

При любом загрязнении рук.

Обеспечение:

1) Жидкое дозированное нейтральное мыло или индивидуальное, одноразовое в кусочках.

Если мыло многоразовое и неиндивидуальное, то оно быстро контаминируется микробами. Мыть руки загрязненным мылом категорически запрещено.

2) Салфетки (15х15), одноразовые, чистые. Использование полотенца не допускается, т.к. онно постоянно влажное и быстро обсеменяется микробами. Вытирать руки таким полотенцем запрещено.

Техника мойки рук. Руки моются двукратным намыливанием по 30 сек. (общее время – 60 сек), тщательно ополаскиваются теплой водой и насухо промокаются одноразовой чистой салфеткой. При первом намыливании и ополаскивании теплой водой микробы смываются с кожи рук, после теплой воды поры открываются, и при втором намыливании смываются микробы из раскрывшихся пор.

2 уровень – Гигиеническая обработка рук.

Цель – более эффективное удаление с кожи рук микрофлоры. В этом случае микрофлора с кожи рук не только смывается, но и уничтожается.

Гигиеническая обработка рук проводится:

Перед и после выполнения инвазивных процедур;

Перед уходом за пациентами с ослабленным иммунитетом;

Перед и после ухода за раной и использования мочевого катетера;

До и после надевания перчаток;

После контакта с биологическими жидкостями организма или при возможном микробном загрязнении.

Обеспечение:

1. Салфетки одноразовые (15х15) для промокания рук.

2. Салфетки (7х7) одноразовые для обработки рук кожными антисептиками.

3. Жидкое дозированное и нейтральное мыло.

4. Кожный антисептик.

5. Перчатки резиновые одноразовые.

Гигиеническая обработка рук состоит из двух этапов:

1й этап – механическая очистка рук.

Руки моются двукратным намыливанием по 30 сек (сумма – 60 сек), тщательно ополаскиваются теплой водой и насухо промокаются одноразовой чистой салфеткой.

2й этап – дезинфекция рук кожными антисептиками.

Средства для обработки рук могут быть двух типов: водные, с добавлением поверхностно-активных веществ (ПАВ), и спиртовые. Спиртовые средства более эффективны, чем водные антисептические растворы.

А) 80% раствор этилового спирта;

Б) 0,5% раствор хлоргексидина биглюконата;

В) кожные антисептики нового поколения.

Порядок мытья рук.

1. Ладонь к ладони;

2. Правая ладонь над тыльной стороной левой;

3. Левая ладонь над тыльной стороной правой;

4. Ногтевые ложа;

5. Ладонь к ладони, пыльцы одной руки в межпальцевых промежутках другой;

6. Вращательное трение больших пальцев;

7. Вращательное трение ладоней.

Каждое движение повторяется 5 раз.

Затем руки тщательно ополаскиваются теплой водой и насухо промокаются стерильной салфеткой.

2 этап – дезинфекция рук кожным антисептиком.

80% раствор этилового спирта как кожный антисептик при хирургической обработке рук не используется.

Генеральная уборка.

Генеральная уборка проводится 1 раз в неделю или после выведения больного из палаты.

Подготовка к проведению генеральной уборки.

1. Накануне проведения уборки ветошь отдается на стерилизацию (8 шт. – для стен, мебели, холодильника, пола по 2 шт.). Маркировка должна быть четкой.

2. В день уборки мебель отодвигается от стен, лекарственные препараты и пищевые продукты выносятся из помещения.

3. Раковины и плинтуса моются чистящим средством щеткой.

4. Сотрудник надевает спец. одежду с маркировкой «для уборки» - 2 комплекта.

Правила надевания спец. одежды:

А) пижама х/б с застежками на спине, резинки на рукавах и штанинах, блуза заправляется в брюки;

Б) ватно-марлевая маска или респиратор;

В) защитные очки;

Г) большая х/б косынка;

Д) резиновые технические перчатки;

Е) резиновые сапоги;

Ж) резиновый или клеенчатый фартук.

По окончанию протирания проводится ультрафиолетовое облучение (УФО). Время облучения зависит от мощности лампы по паспорту и площади помещения. Режим кварцевания должен быть вывешен на «видном» месте.

2. После УФО помещение проветривается до исчезновения запаха.

Дезинфекция (обеззараживание) кварцевых ламп.

Лампа обеззараживается один раз в 7 дней. Каркас моется как стены при генеральной уборке с интервалом 15 мин. 70% раствором этилового спирта.

Туалетные комнаты. Протирание проводится как в процедурном кабинете. Унитаз протирается двукратно тем дезинфицирующим раствором, которым проводится уборка в отделениях – 3% хлорамин или 4% перекись водорода.

Для протирания должен быть квач, который обеззараживается в 3% растворе хлорамина 60 мин., 4% перекиси водорода – 90 мин.

Обработка столовой посуды

Каждая мед. сестра принимает обязательное участие в кормлении больных. Для этого она надевает халат или фартук с маркировкой М\С для раздачи пищи», который находится в буфетной комнате и меняется каждый день. Перед раздачей пищи м/с проводит механическую обработку рук (руки моются двукратным намыливанием, тщательно ополаскиваются теплой водой и насухо вытираются чистым полотенцем, которое меняется ежедневно, или одноразовой салфеткой).

Пища должна быть роздана не позднее 2-х часов с момента получения пищи на пищеблоке.

Температура блюд при раздаче пищи:

1. Первые блюда – 70-75 0 С;

2. Вторые блюда – 60-65 0 С;

3. Третьи блюда – не ниже 14 0 С.

По окончании кормления посуда собирается буфетчицей и доставляется в моечную буфета, а санитарка протирает столы и тумбочки двукратно с интервалом 15 мин. 1% раствором хлорамина или 3% раствором перекиси водорода в соматических отделениях или тем дезинфицирующим раствором, который работает отделение.

В буфетной комнате столовая посуда освобождается от остатков пищи в емкость для пищевых отходов.

Обеззараживание пищевых отходов.

Отходы кипятятся 30 мин. или засыпаются сухой хлорной известью из расчета 200г/л – экспозиция 60 мин. и утилизируется.

Этапы обработки посуды.

1. В первой емкости посуда обезжиривается:

a. В 2% растворе питьевой соды (20 г соды);

b. В 2% растворе горчицы (горчицы 20 г + до 1 л воды).

Условия обезжиривания:

1. Температура обезжиривающих растворов должна быть не ниже 50 0 С.

2. Экспозиция 30 мин.

3. Посуда в этом растворе моется ветошью не менее 1 мин., затем переносится во вторую емкость.

2. Во второй емкости посуда обезжиривается в дезинфицирующих растворах:

a. 1% растворе хлорамина – 60 мин.;

b. 3% растворе Н 2 О 2 – 80 мин.;

Температура дезинфицирующего растворов 18-20 0 С.

3. В третьей емкости посуда ополаскивается в проточной воде при температуре 70-75 0 С до исчезновения запаха. В связи с высокой температурой, посуда ополаскивается из шланга.

Посуда сушится на решетках в вертикальном положении.

4. Ложки вначале обезжириваются а затем обезжириваются в духовке при температуре 180 0 С – 20 мин.

Кухонная посуда, в которой пища доставляется в буфет из пищеблока, проходит два этапа обработки: обезжиривание и ополаскивание и сушится на решетках вверх дном.

Демеркуризация

Демеркуризация – комплекс мероприятий, направленных на дезактивацию ртути.

Укладка для проведения демеркуризации .

1. Емкости 1 л – 2 шт. (стеклянные или эмалированные) с плотно закрывающимися крышками.

2. Навески: 49 гр. стружки хозяйственного мыла + 50 гр. кальцинированной соды, не менее 5 шт.

3. Лейкопластырь – 1 упаковка.

4. Резиновые перчатки – 2 пары.

5. Спец. одежда: халат с застежками на спине, 4-х слойная маска, защитные очки, большая х/б косынка, резиновые перчатки, клеенчатый фартук.

Аварийная ситуация – разбился термометр.

Тактика мед. сестры:

1. Из помещения удалить людей.

2. Надеть спец. одежду.

3. Приготовить рабочий раствор: 1 л 4% раствора мыла + 5% раствор кальцинированной соды = 40 гр. стружки хозяйственного мыла + 50 гр. кальцинированной соды + до 1 л воды (t 0 - 50 0 С).

4. В емкость с маркировкой «для демеркуризации» наливается приготовленный раствор, лейкопластырем с загрязненной поверхности собирается ртуть. Лейкопластырь с ртутью, разбитый термометр замачивается с полным погружением в емкость с раствором, закрывается крышкой.

5. Приготовленным раствором заливается загрязненная поверхности, экспозиция – 30 мин.

6. Через 30 мин. в помещении проводится текущая уборка.

Емкость с собранной ртутью и рабочим раствором сдается старшей мед. сестре. В журнале регистрации аварийных ситуаций с ртутью делается запись.

Журнал регистрации аварийных ситуаций, возникших при работе с ртутью.

№ п/п	Дата	Загрязненная поверхность	Ф.И.О. проводившей демеркуризацию мед. сетры	Ф.И.О. старшей мед. сестры

Обработка изделий медицинского назначения многократного применения

Нормативные документы ОСТ 42-21-85 «Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения. Методы, средства, режимы»; Методические указания по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации изделий медицинского назначения» №МУ-287-113 от 30.12.98 г.

Инструменты , после их использования, делятся на 3 группы:

1 группа – критические инструменты – инструменты, соприкасающиеся с раневой поверхностью, кровью, инъекционными препаратами (пинцеты, карцанги, скальпели, шприцы, иглы и т.д.).

2 группа – условно-критические инструменты – инструменты, соприкасающиеся со слизистыми, которые могут быть ими ранены (нарушение целостности слизистых). Это шпатели, глазные пипетки, зонды дуоденальные, назогастральные, мочевые катетеры, наконечники, эндоскопы и т.д.

3 группа – некритические инструменты – инструменты, соприкасающиеся с неповрежденной кожей или слизистыми (термометры, манжетки от тонометров, грелки, пузыри для льда, судна, мочеприемники, мензурки и т.д.).

Инструменты 1 и 2 групп должны быть стерильными, поэтому проходят три этапа обработки:

1 этап – дезинфекция

2 этап – предстерилизационная очистка

3 этап – стерилизация

Инструменты 3 группы проходят один этап обработки – дезинфекцию.

Дезинфекция и стерилизация относятся к процессу дезактивации. В то время как дезинфекция — процесс устранение или сокращения микроорганизмов с неодушевленных объектов и поверхностей, стерилизация — процесс уничтожения всех микроорганизмов.

В чем разница — дезинфекция и стерилизация

Это главное различие между дезинфекцией и стерилизацией. Стерилизация также разрушает споры различных организмов, присутствующих на поверхностях, в жидкостях, биологической среде. Это «крайняя» мера обеззараживания, которая применяется в критических ситуациях, чаще всего в промышленной, лабораторной или больничной среде. В повседневной жизни гораздо практичнее ограничиваться методами дезинфекции .

Сравнительная таблица

	Дезинфекция	Стерилизация
Определение	Дезинфицирующие средства применяются для ликвидации наиболее вредных организмов (не затрагивая их споры) с поверхностей и объектов. Дезинфекция инактивирует вирусы.	Стерилизация применяется для уничтожения всех микробов — будь то вредные или нет — и их спор, присутствующих на поверхности или объекте.
Методика	Фенольные дезинфицирующие средства, тяжелые металлы, галогены (например, хлора), дезинфицирующие бытовые средства (отбеливатель), спирты, перекись водорода, моющие средства, температурная обработка и пастеризация.	Термальная обработка, химикаты, облучение, высокое давление и фильтрация
Виды	Воздушные дезинфицирующие средства, спирты, альдегиды, окисляющие вещества, фенольные смолы	Термические средства, химическая стерилизация, радиационная стерилизация, стерильная фильтрация
Применение	Дезинфекция применяется в основном для обеззараживания поверхностей и воздуха	Стерилизация применяется к продовольствию, медикаментам и хирургическим инструментам

Методы стерилизации и дезинфекции

Дезинфекция квартиры обычно осуществляется с помощью дезинфицирующих средств (химикатов). Некоторые дезинфицирующие средства могут быть весьма эффективными и обладают широким спектром поражения (обладают способностью разрушать широкий спектр микроорганизмов), в то время как другие могут иметь узкий спектр поражения, но такие средства легче использовать, они чаще нетоксичны и гораздо дешевле.

Стерилизация осуществляется тремя способами: физическим, химическим или физико-химическим. Физические методы включают в себя термальную обработку, радиацию и фильтрацию. Химические методы связаны с применением жидких и газообразных химикатов. Физико-химические методы представляют собой сочетание решений из двух групп.

Виды дезинфекции

Воздушная дезинфекция — дезинфицирующие средства распространяются в форме аэрозоля или пара при достаточной концентрации в воздухе, чтобы воздействовать на жизнеспособные инфекционные микроорганизмы, количество которых будет сокращено в значительной степени. Эти методы задействуют химикаты: пропиленгликоль и триэтиленгликоль.

Спирты — при условии высокой концентрации, могут эффективно инактивировать вирусы, включая ВИЧ, гепатит В и гепатит С. Химические вещества, задействованные в этом методе, как правило, включают этанол или изопропанол. Это безопасное и недорогое решение для применения в бытовой среде, осторожность необходимо проявлять близ огнеопасных предметов.

Альдегиды — эффективны против некоторых спор и грибков. Химия — формальдегид и гультаральдегид.

Окислители — разрушают микроорганизмы. Хлор и кислород являются сильными окислителями, поэтому их соединения используются, например, в традиционных бытовых отбеливателях. На самом деле это наиболее рентабельное средства для дезинфекции квартиры , раствор гипохлорита натрия применяется для чистки туалетов, стоков, бассейнов и поверхностей.

Фенолы — давно известные дезинфицирующие средства для полоскания рта, например. Химия — фенол, хлорксиленол.

Четвертичное амониевое соединение — это эффективное дезинфицирующее средство низкого уровня. Химия — хлорид бензалкония.

Полимеры бигуанида (полиаминопропил бигуанид) — бактерицидное средство при очень низкой концентрации (10 мг / л).

Коротковолновой ультрафиолет высокой интенсивности — применяется для дезинфекции гладких, непрозрачных материалов.

Бикарбонат натрия (NaHCO3) также имеет дезинфицирующие свойства.

Стерилизация — виды и как проводится

Пар — используется на машинах, называемых автоклавами. Автоклавы используют пар, нагретый до 121-134 градусов по Цельсию для стерилизации продолжительностью не менее 15-ти минут или 3-х минут при 134 градусах по Цельсию. Обработка автоклавом инактивирует все грибки, бактерии, вирусы, а также бактериальные споры. Продукты питания также стерилизуются паром, хотя и не так тщательно.

Новое оборудование для дезинфекции

Термальная обработка — стерилизация путем нагревания пламенем, сжигания, кипячения и сухого тепла. Эти методы инактивируют и убивают микроорганизмы на объектах, как стекло и металлы. Кипящая вода в течение 15-ти минут инактивирует вирусы и убивает большинство вегетативных бактерий. Однако она не оказывает никакого влияния на споры.

Тиндализация означает кипячение в течение 20 минут с последующим охлаждением и повторным кипячением, цикл повторяется в течение трех раз. Этот метод является более эффективным против спор бактерий , нежели просто кипячение. Метод сухого тепла может быть использован по отношению к порошкам, которые имеют очень высокое сопротивление температурам.

Химическая стерилизация — химические вещества, как окись этилена, озон, глутаральдегид и формальдегид, перекись водорода, сухая стерилизация, уксусная кислота и серебро применяются в той или иной степени. Продукты, которые могут быть подвержены химической стерилизации, например, биологические материалы, волоконная оптика, электроника и пластмасс. Окись этилена и озон окисляют большинство органических веществ.

Хотя отбеливатель, глутаральдегид и формальдегид применяются в качестве дезинфицирующих средств, в стерилизации они применяются в гораздо большей концентрации, а инфицированный элемент остается погруженным в концентрат гораздо дольше для эффективной стерилизации. Процесс сухой стерилизации с химикатами полезен для стерилизации пластиковых медицинских бутылок и применяется в фармацевтической промышленности.

Радиационная стерилизация — электронные пучки, рентгеновские лучи, гамма-лучи или субатомные частицы используются для стерилизации одноразового медицинского оборудования , включая шприцы, иглы, канюли и шкафы биологической безопасности между использованиями.

Стерилизующая фильтрация — прозрачные жидкости, которые будут повреждены теплом, облучением или химической стерилизацией, могут быть стерилизованы путем механической фильтрации. Фильтрация проводится через поры, которые меньшего размера, нежели рассматриваемый организм, крайне медленный процесс.

Большое значение в стоматологической практике имеют дезин­фекция и стерилизация. Рекомендуемый цикл работы со стоматологи­ческими инструментами после их использования состоит из ряда по­следовательных мероприятий:

Дезинфекции

Предстерилизационной очистки

Стерилизации.

Дезинфекция - комплекс мероприятий, направленных на унич­тожение патогенных, условно-патогенных микроорганизмов, грибов и вирусов в объектах внешней среды. Использованные инструменты за­мачиваются в специальном дезинфицирующем растворе. В стомато­логии используются следующие методы дезинфекции:

1. физический (использование высоких температур, УФ-лучей)

2. химический (использование растворов химических веществ),

Химические средства действуют на обеззараживаемые объекты более поверхностно, чем высокая температура, тем не менее на прак­тике они значительно удобнее и доступнее, чем применение высокой температуры. Кроме того, многие изделия, портящиеся под воздейст­вием кипячения или сухого жара, переносят без ущерба действие хи­мических дезинфектантов. В качестве средств дезинфекции и пред­стерилизационной очистки используют только разрешенные в уста­новленном порядке в Республике Казахстан химические средства.

Предстерилизационная очистка предусматривает удаление с изделий белковых, жировых и механических загрязнений. Все инст­рументы и лотки перед стерилизацией должны быть очищены мою­щим раствором, что делается обычно в раковине или в аппарате для ультразвуковой очистки. Разъемные изделия подвергают предстерилизационной очистке в разобранном виде. Предстерилизационную очистку осуществляют ручным или механизированным способом. Наиболее оптимальным и экономным вариантом является сочетание в одном этапе дезинфекции и предстерилизационной очистки. В на­стоящее время в ассортименте имеется моющее и дезинфицирующее оборудование, например, машина для мойки и термической дезинфек­ции G7781 TD, моечная машина AMSCO Reliance 444 с использовани­ем ультразвука, ультразвуковая установка "Серьга", ультразвуковая ванна "Ультраэст", "Россоник", ультразвуковая мойка "AMSCO Reliance" и др.

Под термином «стерилизация» (от лат. sterilis - бесплодный) подразумевается отсутствие признаков жизни, обусловленное полным уничтожением в стерилизуемом объекте вегетативных и споровых форм микробов. Стерилизация - самый эффективный метод борьбы с перекрестной инфекцией. Кроме того, необходимо обеспечить стерильное хранение инструментов до момента их использования врачом-стоматологом. Содержание в стерильности рабочего инструмента имеет наиважнейшее значение как гарантия прерывания цикла переноса инфекции. Стерилизации подвергаются все изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, контактирующие с кровью или инъекционными препаратами, медицинские инструменты, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистой оболочкой полости рта и могут вызвать ее повреждение, белье. Стерилизации подлежат стоматологические наборы в лотках, сепарационные диски, карборундовые камни, фрезы металлические, зеркала, стекла для замешивания, алмазные диски, оттискные металлические диски, боры и другие инструменты. Используют следующие методы стерилизации:

Стерилизация паром под давлением в паровом стерилизаторе (автоклаве) - применяется для изделий из коррозийно-стойких металлов, стекла, изделий из текстильных материалов (хирургическое белье, перевязочный материал), резины (перчатки, трубки).

Стерилизацию сухим жаром в воздушных стерилизаторах - рекомендуется для изделий из металла и стекла. Мелкий стоматологический инструментарий: боры, эндодонтический инструмент, зеркала без ручек после предстерилизационной обработки во время работы с пациентом допускается стерилизовать в «Гласперленовом стерилизаторе». Для стерилизации стоматологического инструментария, мягкого материала используют «Кавоклавы».

Химический метод наиболее часто используют для стерилизации изделий из полимерных материалов, резины, специального стекла, коррозийно-нестойких металлов. Газовый метод стери­лизации используется в стерилизаторе-аэраторе «Eagle» и сте­рилизаторе «Стеррад».

Мелкий инструментарий типа пульпоэкстракторов и каналона-полнителей повторно не используется. Новые инструменты исполь­зуются только после проведения предстерилизационной обработки и стерилизации.

Альтернативой старому методу укладки медицинских инстру­ментов на стол с использованием простыни являются полки "Ультра-виол" и камеры "Ультра-лайт", предназначенные для хранения пред­варительно простерилизованных медицинских инструментов с целью предотвращения их вторичной контаминации микроорганизмами и обеспечивающие их постоянную готовность к работе в процессе дли­тельного хранения (до 7 суток). Принцип работы этих изделий осно­ван на бактерицидном действии ультрафиолетового излучения.

Дезинфекция и стерилизация являются ключевыми моментами санитарно-гигиенического режима. Помещение стоматологического кабинета делится на три гигиенических зоны:

1. Зону лечения

2. Границу зоны лечения (зону разбрызгивания)

3. Приграничную часть.

Самый высокий уровень гигиены должен соблюдаться непо­средственно в зоне лечения, в которой находятся столик лечащего врача со стерильным лотком со стерильными инструментами, сте­рильными салфетками и ватными валиками, перчатки стоматолога. Все поверхности в этой зоне лечения дезинфицируются перед нача­лом рабочего дня и после каждого пациента, даже если не видно яв­ных следов загрязнения. Стерильные инструменты, которые в данный момент не используются, должны быть надежно закрыты и находить­ся вне зоны лечения, позади пациента во избежание нечаянного за­грязнения.

Ко 2-й зоне относят стоматологические наконечники, воздуш­ные пистолеты, отсасывающие наконечники и шланги, операционные светильники, плевательницы, кнопки управления креслом и аппарату­ры, краны и раковины. Их также необходимо обрабатывать дезинфи­цирующими средствами после каждого пациента.

Приграничная (остальная) часть кабинета и находящиеся в ней предметы и поверхности (стены, полы, двери, шкафы) подвергаются ежедневной влажной уборке и хорошей вентиляции. Во время приема пациента такие предметы, как амбулаторная карта, канцелярская руч­ка должны находиться позади пациента во избежание их загрязнения. Записи делают только чистыми руками после окончания лечения.

Даже такая вроде бы незначительная профилактическая проце­дура, как полоскание рта пациентом перед началом лечения, умень­шает содержание бактерий в любых аэрозолях, образующихся во вре­мя лечения. Так, применение воды снижает количество бактерий на 75 %, а бактерицидных жидкостей - до 98 %.

Все вышеупомянутые меры при их кажущейся простоте и дос­тупности являются высокоэффективными для достижения целей про­филактики заболевания медицинского персонала в ходе проведения стоматологических манипуляций.

Дезинфекция (лат.des– приставка, обозначающая уничтожение и лат.infectio- инфекция) – это уничтожение в окружающей человека среде возбудителей инфекционных заболеваний: бактерий, вирусов и их (бактерий) переносчиков. В этом случае гибнут только вегетирующие формы микроорганизмов, загрязняющие обрабатываемые предметы.

Стерилизация – это уничтожение не только вегетирующих форм микроорганизмов, но и их спор, которые, как известно, отличаются особой устойчивостью к воздействию внешней среды.

Добиться уничтожения микроорганизмов можно путем воздействия, как физических факторов, так и химических средств, причем в зависимости от продолжительности воздействия (экспозиции) и интенсивности (концентрации) дезинфицирующих средств.

Виды дезинфекции.

Различают профилактическую и очаговую дезинфекцию.

Профилактическая дезинфекция осуществляется с целью предупреждения внутрибольничных инфекций.

Очаговая дезинфекция делится на очаговую и текущую дезинфекцию, которая осуществляется в очаге инфекции, у постели инфекционного больного, проводится многократно, и очаговую, заключительную, дезинфекцию, которая проводится однократно после изоляции, госпитализации в инфекционное отделение, выздоровления или смерти больного с целью полного освобождения инфекционного очага от возбудителей заболевания.

Методы и средства дезинфекции.

Механические методы дезинфекции это:

Влажная уборка помещений и обстановки;

Выколачивание одежды, постельного белья и постельных принадлежностей;

Освобождение помещений от пыли с помощью пылесоса, побелка и окраска

помещений;

Мытье рук.

Физические средства и методы(термические) – это:

Солнечные лучи и облучение ультрафиолетовыми излучениями;

Проглаживание горячим утюгом, обжиг, прокаливание;

Сжигание мусора и предметов, не имевших ценности;

Обработка кипятком или нагревание до кипения;

Пастеризация;

Тиндализация (дробная пастеризация в течение 6-7 дней при 60 0 С, экспозиция -1 час.);

Кипячение;

Воздушный метод дезинфекции (сухожаровой шкаф при t=120 0 С, экспозиция 45 мин.);

Паровой метод дезинфекции в специальных дезинфекционных камерах – паровоздушных или пароформалиновых – в режиме 0,5 атм, t=90 0 С, экспозиция 30 минут.

Сущность камерной дезинфекции заключается в прогревании содержимого камер горячим воздухом (паром) до определенной температуры и при избыточном давлении, а при необходимости усиления воздействия пара – в дополнительном введении в камеру формальдегида (формалина).

Химические средства дезинфекции , обладающие сильными окисляющими свойствами, используются в виде водных растворов, эмульсий, порошков и др. К ним относятся:

Перекись водорода (H 2 O 2);

Перманганат калия (KMnO 4);

Дезоксон-1 и др.

К химическим методам дезинфекции относятся:

Орошение;

Протирание;

Полное погружение;

Пароформалиновый (см. выше).

Характеристика основных средств дезинфекции.

Основными средствами дезинфекции являются хлорсодержащие, кислородсодержащие, поверхностно-активные средства, гуанидины, альдегидсодержащие, спирты, фенолсодержащие средства.

Хлорная известь представляет собой порошок белого цвета, щелочной реакции, имеющий резкий раздражающий запах. Качество хлорной извести зависит от содержания активного хлора (CL -) в количестве 25% по активному хлору. При снижении активности хлора до 15% хлорная известь к применению непригодна.

Применяется для обеззараживания воды, посуды, помещений, выделений пациента, туалетов и т.д. в виде 0,5-10%-ных водных растворов и в сухом виде. Сухой хлорной известью засыпают только выделения пациента, остатки пищи, промывании воды в соотношении 1:5 (200 г. сухой хлорной извести на 1 л. Биологических жидкостей).

Хлорамин-Б. Активность – 26% поCL - . Исходным продуктом для изготовления хлорамина-Б является бензол (хлорамина-Т - толуол). Хлорамин-Б растворим в воде, его растворы не портят и не обесцвечивают ткани. Горячие растворы (50, 60 0 С) и активированные растворы хлорамина обладают более высоким обеззараживающим действием.

Применяется хлорамин для дезинфекции предметов медицинского назначения, профилактической и очаговой дезинфекции (кишечные, капельные инфекции бактериальной и вирусной этиологии, туберкулез, грибковые заболевания).

Гипохлорит кальция нейтральный. Активность 52% активногоCL - . В лечебных учреждениях используется порошкообразный гипохлорит кальция (ДТСГК – две-третьосновная соль гипохлорита кальция) белого цвета. Образуется слегка мутный раствор, который можно использовать через 30 мин. после приготовления. Стоек при хранении, мало гигроскопичен и даже на воздухе сохраняет активность поCL - .

Хлоргексидин биглюконат (гибитан) (производство фирм Англии и Польши). Прозрачный 20%-ный раствор, не имеет запаха. Особых условий хранения не требует. Относится к классу так называемых поверхностно-активных веществ. Хорошо растворим в воде, спирте, не изменяет своих свойств при длительном хранении, имеет длительный антимикробный эффект, обладает выраженным дезодорирующим действием, не вызывает явной коррозии металлов при кратковременном (2-3 мин.) пребывании инструментов в растворе.

На протей, кислотоустойчивые палочки, вирусы и споры препарат действия не оказывает.

Предназначен для обеззараживания хирургического инструментария, рук хирурга, медсестер, акушерок. Используется в качестве лечебного, антисептического средства, а также для текущей и заключительной дезинфекции.

Перекись водорода (H 2 O 2 ) относится к группе окислителей. Выпускается промышленностью в виде водного раствора 29-30%-ной концентрации под названиемпергидроль. Представляет собой жидкость без запаха и цвета, горько-вяжущего вкуса. Обладает высокими бактерицидными свойствами. Растворы перекиси водорода в количестве 0,5-6%-ной концентрации не портят предметы, не коррозируют металлы, малотоксичны. Применяются в 3-4%-ной концентрации, с экспозицией от 80 до 180 мин. с моющими средствами («Прогресс» и др.), позволяют объединить процесс химического обеззараживания после отмывания крови с механической очисткой, в результате чего усиливается дезинфицирующий эффект; 0,5%-ной концентрации с 0,5%-ным моющим средством для предстерилизационной очистки при температуре 45-50 0 С, экспозиция 15 мин.

Растворы перекиси водорода хранятся в темном, прохладном месте, недоступном для общего пользования. Бутылки с пергидролем должны иметь кожух. Переносить осторожно.

Медицинский инструментарий немедленно после работы с пациентом должен подвергаться дезинфекции. Некоторые изделия медицинского назначения, такие как зеркала (стоматологические и ЛОР), после дезинфекции и отмывки от дезинфектанта готовы к последующему использованию, т. е. не требуют стерилизации.

Дезинфекцию инструментов осуществляют физическим или химическим методом. Среди физических методов наиболее распространенным является кипячение в воде в течение 30 мин., а с добавлением питьевой соды (20г/л) в течение 15 мин. Однако чаще применяют химический метод дезинфекции при полном погружении инструментов в емкость с дезинфицирующим раствором. Эту операцию проводят сразу после использования инструментов, не допуская их подсушивания. Разъемные изделия погружают в разобранном виде. Каналы изделий должны быть заполнены раствором без образования воздушных пробок.

После окончания дезинфекции все инструменты промывают проточной водой или отмывают методом погружения в емкости с водой, соблюдая минимальное время экспозиции и соотношение воды к объему, занимаемому изделиями (3:1). Все полости и каналы инструментария должны быть тщательно промыты от дезинфектанта, последние - с помощью шприца или водоструйного насоса.

Изделия медицинского назначения или части некоторых изделий, не соприкасающиеся непосредственно с пациентом, дезинфицируют методом протирания тампоном, смоченным в дезинфектанте.

Широкое использование химических средств дезинфекции требует проведения контроля качества дезинфектантов.

Контроль качества дезинфектантов состоит в определении содержания активнодействующего вещества с помощью лабораторных исследований или экспресс-методом.

С целью проведения лабораторного контроля проводят отбор проб сухих дезинфицирующих средств и их растворов в соответствии с методикой и направляют для анализа в химическую лабораторию.

Экспресс-метод контроля дезинфектантов позволяет в течение нескольких секунд определить концентрацию действующего вещества в растворе с помощью индикаторных бумажных полосок. Например, для хлорамина, хлорной извести разработан хлор-тест, для перекиси водорода - пероксид-тест, хлоргексидина биглюконата (гибитана) - ЧАС-тест, нейтрального анолита - миллихлор. При опускании индикаторной полоски в исследуемый раствор на 1 сек. она меняет цвет в зависимости от концентрации активнодействующего вещества, которую определяют в процентах при сравнении индикаторной полоски со шкалой цветности.

Стерилизация медицинская - полное освобождение вещества или предмета от микроорганизмов, т. е. уничтожение вегетативных и споровых патогенных и непатогенных форм путем воздействия на него физических или химических агентов.

Стерилизации подвергают все изделия медицинского назначения, соприкасающиеся с раневой поверхностью, контактирующие с кровью или инъекционными препаратами, а также отдельные виды медицинских инструментов, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистой оболочкой и могут вызвать ее повреждение.

Обработка изделий, подлежащих стерилизации, включает три этапа:

Дезинфекция;

Предстерилизационная очистка;

Стерилизация.

Первый этап - дезинфекция медицинских инструментов - описана в предыдущем разделе. Второй этап обработки инструментов, подлежащих стерилизации, - предстерилизационная очистка имеет целью удаление белковых, жировых, механических загрязнений и остаточных количеств лекарственных препаратов. Предстерилизационную очистку осуществляют механизированным или ручным способами с использованием разрешенных моющих средств. Разъемные изделия подвергают предстерилизационной очистке в разобранном виде и с заполнением каналов (см.ОСТ 42-21-2-85) .

Механизированную очистку проводят в моечных машинах специального назначения: для игл, шприцев, различных инструментов.

Ручным способом обработку проводят в следующей последовательности:

Промывание изделия проточной водой в течение 0,5 мин.;

Замачивание при полном погружении изделия на 15 мин. при 50 °С в моющем растворе 0,5%«Биолот» или 0,5% растворе перекиси водорода с 0,5% одного из синтетических моющих средств (CMC): «Лотос», «Лотос-автомат», «Астра», «Айна», «Маричка», «Прогресс»;

Мойка каждого изделия в том же моющем растворе с помощью ватно-марлевого тампона или ерша в течение 0,5 мин.;

Ополаскивание проточной, а затем дистиллированной водой;

Сушка горячим воздухом при температуре 75-87 °С в сушильных шкафах до полного исчезновения влаги.

Известно, что перекись водорода вызывает коррозию инструментов из коррозионно-неустойчивых металлов, поэтому в моющий раствор целесообразно добавлять ингибитор коррозии в концентрации 1,4 г/л.

Раствор «Биолот» для замачивания и мойки изделий применяют однократно, а моющий раствор перекиси водорода с CMC можно использовать в течение суток.

В настоящее время созданы средства, сочетающие дезинфицирующие и моющие свойства и позволяющие проводить одновременно дезинфекцию и предстерилизационную очистку инструментов в один этап («Лизетол АФ», «Септодор-Форте», «Деконекс Денталь ББ», «Дюльбак», «Гротанат»). С этой же целью можно применять нейтральные анолиты, получаемые на диафрагменных электрохимических установках из растворов поваренной соли. Католиты, получаемые в катодных камерах установок, обладают только моющими свойствами, их применяют для предстерилизационной очистки инструментов из любых материалов.

Контроль качества предстерилизационной обработки проводят выборочно (1% изделий каждого наименования) путем постановки проб на остаточную кровь (азопирамовой или амидопириновой) и остатки моющего средства (фенолфталеиновой). Азопирам, кроме следов крови, выявляет наличие на изделиях остаточных количеств пероксидаз растительного происхождения, хлорамина, хлорной извести, стирального порошка с отбеливателем, а также ржавчины и кислот.

Контролю на наличие жира подвергают шприцы, использованные для масляных инъекций, проводят пробу с Суданом III.

При положительной пробе на кровь, моющее средство или жир всю партию контролируемых изделий подвергают повторной обработке до получения отрицательных результатов.

Стерилизацию изделий медицинского назначения осуществляют следующими методами:

Термическим (паровые, воздушные, гласперленовые стерилизаторы);

Химическим (растворы химических веществ, газовая стерилизация);

Радиационным (установки с радиоактивным источником
излучения).

В последнее время на основе принципиально новых технологий созданы плазменные стерилизаторы, использующие энергию воздействия потока активированных молекул инертного газа, ускоренных в электрическом поле, на поверхность стерилизуемых объектов, а также озоновые стерилизаторы.

Оптимальный метод стерилизации определяют с учетом материала, из которого состоит обрабатываемое изделие, его конструктивного исполнения, необходимости длительного сохранения стерильности и др.

В практике работы ЛПУ наиболее широко применяют термический метод стерилизации с использованием паровых и воздушных стерилизаторов.

Паровой метод стерилизации. В паровых стерилизаторах обрабатывают хирургическое белье, перевязочный материал, хирургические инструменты, детали приборов и аппаратов из коррозиестойких материалов, стекла (в том числе шприцы с пометкой 200 °С), резины (катетеры, зонды, трубки, перчатки), текстильных материалов.

Стерилизующим агентом является насыщенный водяной пар под избыточным давлением. Температурный режим стерилизации в современных паровых стерилизаторах варьирует от 126 до 141 °С, а время стерилизации соответственно от 3 до 10 мин.

Эффективность стерилизации в паровом стерилизаторе зависит от правильного выбора упаковки, соблюдения правил загрузки и плотности загрузки для свободного прохождения пара.

Воздушный метод стерилизации. В воздушных стерилизаторах стерилизующим агентом является сухой горячий воздух, при этом не происходит увлажнения упаковки и изделий и не наблюдается коррозия коррозионно-неустойчивых металлов, не осложняются условия сохранения стерильности. Однако по эффективности воздействия на микроорганизмы он уступает пару, и для обеспечения стерилизации требуются более высокие температуры. Режимы стерилизации воздушным методом в стерилизаторах нового поколения характеризуются температурой от 160 до 200 °С и временем стерилизации от 30 до 120 мин.

Воздушным методом стерилизуют хирургические и гинекологические инструменты, детали и узлы приборов и аппаратов, в том числе изготовленных из коррозионно-неустойчивых материалов, инъекционные иглы, шприцы с пометкой 200 °С и др.

Газовый метод стерилизации. Стерилизацию в газовых стерилизаторах осуществляют при невысоких температурах (18- 80 °С) с применением оксида этилена, смеси ОБ (смесь оксида этилена и бромистого метила в весовом соотношении 1:2,5), а также паров раствора формалина в этиловом спирте. Изделия стерилизуют в упаковке из полиэтиленовой пленки, пергамента или бумаги оберточной марки. Газовую стерилизацию в качестве «холодного» метода используют для термолабильных изделий медицинского назначения из полимерных материалов (резины, пластмассы), колющих, режущих хирургических инструментов, имеющих зеркальные поверхности, оптического оборудования (эндоскопы), кардиостимуляторов, предметов одноразового пользования.

Срок хранения изделий, стерилизованных газовым методом в полиэтиленовой пленке, - годы, в остальных упаковках - 20 сут.

Метод стерилизации с помощью растворов химических средств. Для стерилизации рекомендованы растворы: анолит нейтральный, «Бианол», «Гигасепт ФФ», глутаровый альдегид, «Дюльбак растворимый», «Колдспор», «Лизоформин 300», «Первомур» (4,8 %), перекись водорода (6 %), «Сайдекс».

В растворах химических веществ обрабатывают инструменты из коррозиестойких материалов, изделия из стекла, пластмасс, металла (сплавы титана), резины на основе силиконового каучука, в том числе эндоскопы. Лигатурный шовный материал может быть стерилизован «Первомуром» в концентрации 4,8 % в отличие от «Первомура» для обработки рук (2,4 %).

Гласперленовые стерилизаторы используют для стерилизации мелких стоматологических инструментов. В качестве стерилизующей среды - нагретые стеклянные шарики.

Радиационный метод стерилизации - ведущий метод промышленной стерилизации на предприятиях, выпускающих стерильные изделия медицинского назначения однократного применения: пластмассовые зонды, катетеры, трубки, системы для взятия и переливания крови, акушерские комплекты, перевязочный материал.

Стерилизующим агентом являются ионизирующие гамма- и бета-излучения. Энергия используемых для стерилизации излучений не вызывает наведенной радиации у стерилизуемых изделий. Срок сохранения стерильности в индивидуальной упаковке из полиэтиленовой пленки исчисляется годами, но ограничивается сроком годности изделия к использованию и указывается на упаковке.

Контроль стерилизации проводят с помощью физического и химического методов.

Физический метод контроля работы стерилизаторов осуществляют с помощью контрольно-измерительных приборов, фиксирующих температуру, давление и время.

Химический метод состоит в использовании химических тестов и термохимических индикаторов, которые размещают в стерилизационной камере в контрольных точках при каждой закладке инструментов и материалов как вне упаковок, так и в стерилизационные коробки (биксы) и внутри упаковок. При обнаружении неудовлетворительных результатов контроля загрузку считают нестерильной.

Эффективность стерилизации контролируют бактериологическим методом, используя биотесты стерилизации, представляющие собой объекты (флаконы, фольгу и др.), обсемененные тест-микроорганизмами, например спорами B.Stearothermophilus или В. Ucheniformis. На основании гибели тест-микроорганизмов делают заключение об эффективности процесса.

Контроль стерильности заключается в определении на изделиях, подвергнутых стерилизации, тест-микроорганизмов, способных к размножению.